本试剂盒可从新鲜、冷冻或石蜡包埋的动物组织、细胞、血液或细菌中快速纯化出基因组DNA (但其他形式的DNA,比如线粒体DNA也会一起被纯化出来)。
样品首先在优化过的缓冲液中被proteinase K裂解。然后将溶解产物加入到SD-10吸附柱,DNA会被选择性地吸附到柱子内嵌的吸附膜上。洗涤步骤中,蛋白和其他杂质会被去除,DNA则在低盐缓冲液中被洗脱出来。纯化的DNA A260/A280通常为1.7~1.9,非常适合用于后续实验,比如PCR、Southern blotting,RAPD和RFLP等
纯化过程无需苯酚/氯仿抽提或乙醇沉淀,操作简单。样品准备好后整个操作过程仅需20min即可完成。不同样品的DNA得率不同,这取决于组织样品的数量和类型,对于大多数组织样品,从25mg样品中可获得5~15μg DNA。
- 纯化出的DNA OD260/OD280通常为1.7~1.9。
- 纯化出的基因组DNA质量高,分子量≥20kb。
- 采用柱式核酸纯化技术,操作简单快速。
- 产物可用于许多下游应用,比如PCR,限制性酶切和杂交。
- 无需苯酚/氯仿抽提或乙醇沉淀。
- 得率高,重复性好。
- 适用于各种不同来源的样品。
组分 | 50T | 100T | 250T |
Buffer ACL | 10mL | 20mL | 50mL |
Buffer CL | 12mL | 24mL | 60mL |
CW1 Solution(浓缩液) | 13mL | 26mL | 65mL |
CW2 Solution(浓缩液) | 9mL | 18mL | 45mL |
CE Buffer (pH9.0) | 15mL | 30mL | 2×30mL |
Proteinase K | 1.25mL | 2×1.25mL | 5×1.25mL |
SD-10吸附柱(含2mL收集管) | 50 | 100套 | 250套 |
保存:室温干燥,有效期1年,其中Proteinase K置于2~8℃保存。
- Buffer ACL和Buffer CL保存过程中可能会形成沉淀,使用前加热至56℃使沉淀溶解。
- 提供的CW1 solution和CW2 solution为浓缩液。使用前,加入指定量的乙醇(96~100%)配成工作液。
样品 | 用量 | 得率(μg) |
动物组织 | 25mg | 5~15 |
细胞 | 1~3×107 | 15~25 |
血液 | 50~100μL | 1~3 |
细菌 | 1mL | 7~15 |
- 离心速度至少达到12000×g的小型离心机
- 移液枪和枪头
- 涡旋混合器
- 乙醇(96~100%)
- RNase A (10mg/mL,选做,用于获得RNA-free的DNA)
- 离心管(1.5mL或2mL)
- 水浴锅,使用前将水浴锅预热至56℃。
本试剂盒可从新鲜、冷冻或石蜡包埋的动物组织、细胞、血液或细菌中快速纯化出总DNA。所有离心步骤均在室温条件(15~25℃)下及离心管中进行。实验开始前请详细阅读说明书。本试剂盒方法简单、快速、可靠,步骤紧凑。实验开始前,请根据下表准备好所有试剂及所需材料。
提供的Proteinase K为即用型的溶液,但是本试剂盒不提供RNase A。如果需要制备无RNA污染的DNA,请准备好RNase A溶液,并根据说明书增加去除RNA的步骤。
使用前检查Buffer ACL和Buffer CL是否出现沉淀。如果有,将溶液加热至56℃重新溶解沉淀。
CE Buffer为10mM Tris-HCl,0.5mM EDTA,pH9.0。后续实验中如果要避免使用EDTA,可用水作为洗脱液,但是不推荐使用pH小于7.0的水。
提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。第一次使用前,分别向13mL/26mL/65mL CW1 Solution加入17mL/34mL/85mL乙醇;向9mL/18mL/45mL CW2 Solution加入21mL/42mL/105mL乙醇。
50次 | 100次 | 250次 | |
CW1 Solution | 13mL | 26mL | 65mL |
乙醇(96~100%) | 17mL | 34mL | 85mL |
CW1最终体积 | 30mL | 60mL | 150mL |
50次 | 100次 | 250次 | |
CW2 Solution | 9mL | 18mL | 45mL |
乙醇(96~100%) | 21mL | 42mL | 105mL |
CW2最终体积 | 30mL | 60mL | 150mL |
样品采集和保存:
使用新鲜样品可获得最好的结果。如果样品使用前需要保存,将样品立即冷冻并置于-20℃或-80℃长期保存。避免反复冻融,防止DNA降解。
采集的血液中加入EDTA或ACD等抗凝剂,防止血液形成血块。但不推荐使用肝素,因为提取过程中肝素可能会结合到DNA上,并抑制PCR反应。
Proteinase K溶液消化后,组织样品可在Buffer ACL中室温保存6个月,对DNA质量无影响。
样品使用量:
基因组DNA得率和质量取决于样品使用量。不可超过裂解液裂解能力及吸附膜的吸附能力。根据下表使用适量的样品:
样品 | 用量 |
肌肉 | 30mg |
肝或脑 | 20mg |
肾或脾 | 10mg |
哺乳动物血液 | 100μL |
鸟类或鱼类血液(含有核红细胞) | 10μL |
小鼠尾巴 | 1.2cm |
大鼠尾巴 | 0.6cm |
培养的细胞 | 5×106 |
细菌 | 2×109 |
一、新鲜或冻存的动物组织
- 实验准备:
- Buffer ACL和Buffer CL储存过程中可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前将溶液加热至56℃溶解沉淀。
- 提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入了乙醇。
- 水浴锅56℃预热。
- Buffer ACL和Buffer CL储存过程中可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前将溶液加热至56℃溶解沉淀。
- 抽提步骤
- 将25mg组织切成小块,液氮中研磨,将粉末转移至1.5mL离心管中,并加入180μL Buffer ACL,混合均匀。
- 不要使用超过30mg的组织样品,过量的样品将导致得率降低。
- 冻存的组织样品应避免反复冻融,以免导致DNA的降解。
- 对于啮齿类动物的尾巴,大鼠取0.4~0.6cm,小鼠取1.0~1.2cm。
- 细胞含量高的组织,比如脾,不要使用超过10mg的样品。
- 不要使用超过30mg的组织样品,过量的样品将导致得率降低。
- 加入20μL proteinase K。涡旋充分混匀,56℃水浴直到组织完全裂解。
- 水浴过程间歇混匀促进样品裂解。
- 裂解时间因组织类型而异,通常为1~3h,也可裂解过夜。
- 水浴后,裂解产物可能会粘稠,但不应该是胶状的,因为这样会堵塞SD-10吸附柱。如果裂解液为明显胶状,则应延长裂解时间。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,则加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤3。
- 水浴过程间歇混匀促进样品裂解。
- 涡旋混匀15 s。加入200μL Buffer CL到样品中,涡旋充分混匀。
- 加入200μL乙醇(96~100%),再次充分混匀。
- 将步骤4中的混合液(包括全部沉淀)加入到放置在2mL收集管的SD-10吸附柱。9000×g(12000rpm)离心1min。倒掉收集管中的液体。
- 加入500μL CW1 Solution,9000×g(12000rpm)离心1min。倒掉收集管中的液体。
- 检查CW1 Solution是否已加入乙醇。
- 加入500μL CW2 Solution,9000×g(12000rpm)离心1min。倒掉收集管中的液体。
- 检查CW2 Solution是否已加入乙醇。
- 将空吸附柱放回离心管中,9000×g(12000rpm)离心2min,使吸附膜干燥。将吸附柱放入一个干净的1.5mL离心管中。吸附柱开盖,室温静置2~3min,直至乙醇完全挥发。
- 将SD-10吸附柱内的吸附膜干燥是必要的,因为残留的乙醇会影响后续反应。这一步骤的离心确保接下来的洗脱过程不会带入残留的乙醇。
- 直接向吸附膜中央加入50~100μL Buffer CE。室温静置2min,9000×g(12000rpm)离心2min以洗脱DNA。
- 将CE Buffer加热至60℃可提高洗脱效率。
- 使用超过100μL (比如200μL)的洗脱液可提高DNA得率,但浓度会降低。
- 为获得最高的DNA得率,根据步骤9再次洗脱。
- 第二次洗脱时使用新的离心管,以免第一次洗脱出的DNA浓度降低。
- 为获得最高的DNA浓度,将离心管中洗脱出的溶液用于第二次洗脱。
- 将CE Buffer加热至60℃可提高洗脱效率。
- 将25mg组织切成小块,液氮中研磨,将粉末转移至1.5mL离心管中,并加入180μL Buffer ACL,混合均匀。
二、培养的细胞
- 用户自备材料
准备PBS溶液:150mM氯化钠,50mM磷酸钾,pH=7.2。
细胞基因组DNA提取不需要用到本试剂盒中的Buffer ACL。 - 实验准备
- Buffer CL储存过程中可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前将溶液加热至56℃溶解沉淀。
- 提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入了乙醇。
- 水浴锅56℃预热
- Buffer CL储存过程中可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前将溶液加热至56℃溶解沉淀。
- 抽提步骤
- 样品准备(培养的细胞)
a.悬浮培养细胞:将适当数量的细胞室温3000×g离心5min(最多1×106个细胞)。小心吸走上清。加入200μL PBS Solution,200μL Buffer CL和20μL proteinase K。涡旋充分混匀。
b.贴壁培养细胞:吸走培养基,每10cm2细胞加入200μL PBS Solution,200μL Buffer CL和20μL proteinase K。充分混匀。- 如果不能立即提取样品基因组DNA,建议-80℃长期保存。
- 保存的样品避免反复冻融,防止DNA降解。
- 如果不能立即提取样品基因组DNA,建议-80℃长期保存。
- 56℃水浴10min,直到细胞完全裂解。
- 水浴过程间歇混匀,促进细胞裂解。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤3。
- 水浴过程间歇混匀,促进细胞裂解。
- 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤4-9操作。
- 样品准备(培养的细胞)
三、新鲜或冻存的抗凝血
- 用户自备材料(血液)
准备PBS溶液:150mM氯化钠,50mM磷酸钾,pH=7.2。
血液基因组DNA提取不需要用到本试剂盒中的Buffer ACL。 - 实验准备
- Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入乙醇。
- 水浴锅56℃预热。
- Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 抽提步骤
- 样品准备
- 无核的:吸20μL proteinase K到1.5mL或2mL离心管中。加入50~100μL抗凝血液。用PBS溶液调整体积到220μL。进行步骤2。
- 有核的:吸20μL proteinase K到1.5mL或2mL离心管中。加入5~10μL抗凝血液。用PBS溶液调整体积到220μL。
进行步骤2。
- 如果样品不能立即用于基因组DNA的抽提,建议在-80℃长期保存。
- 保存的样品避免反复冻融,防止DNA的降解。
- 无核的:吸20μL proteinase K到1.5mL或2mL离心管中。加入50~100μL抗凝血液。用PBS溶液调整体积到220μL。进行步骤2。
- 加入200μL Buffer CL到样品中,涡旋充分混匀。56℃水浴10min。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤3。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤4-9操作。
- 样品准备
四、包埋或固定的样品
- 用户自备材料(石蜡包埋或福尔马林固定的样品)
- 二甲苯(石蜡包埋的动物组织)
- 准备PBS溶液:150mM氯化钠,50mM磷酸钾,pH=7.2(福尔马林固定的动物组织)。
- 固定的组织中纯化出来的DNA长度通常<650bp,大小取决于样品的类型和年龄以及固定剂的质量。
- 推荐使用酒精、福尔马林等固定剂。不推荐使用可形成交联的固定剂,如饿酸等,因为用这些试剂固定的样品,难以获得扩增的DNA。
- 样品之间裂解时间各不相同,这取决于样品的处理方式。
- 得率取决于样品的大小和年龄。相对于新鲜或冻存的样品,得率通常会降低。
- 二甲苯(石蜡包埋的动物组织)
- 实验准备
- Buffer ACL和Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入乙醇。
- 水浴锅56℃预热。
- Buffer ACL和Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 抽提步骤(石蜡包埋样品)
- 将一小块(不超过25mg)石蜡包埋的样品放入2mL离心管中(未提供)。
- 加入1200μL二甲苯,剧烈涡旋。
- 室温(15~25℃)最大速度离心5min。
- 用移液枪吸走上清,勿吸到沉淀。
- 向沉淀加入1200μL乙醇(96~100%)以除去残留的二甲苯,涡旋轻轻混匀。
- 室温(15~25℃)最大速度离心5min。
- 用移液枪吸走乙醇,勿吸到沉淀。
- 重复步骤5-7一次。
- 离心管开盖后37℃烘10~15min,直到乙醇挥发完全。
- 在180μL Buffer ACL和20μL proteinase K中用研钵研磨组织沉淀。涡旋混合均匀,56℃水浴直到组织完全裂解。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤11。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤3-9操作。
- 将一小块(不超过25mg)石蜡包埋的样品放入2mL离心管中(未提供)。
- 抽提步骤(福尔马林固定的样品)
- 将一小块(不超过25mg)福尔马林固定的样品放入1.5mL离心管中。
- 用PBS溶液清洗样品以除去福尔马林。
- 重复步骤2一次。
- 在180μL Buffer ACL和20μL proteinase K中用研钵研磨组织沉淀。涡旋混合均匀,56℃水浴直到组织完全裂解。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤5。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤3-9操作。
- 将一小块(不超过25mg)福尔马林固定的样品放入1.5mL离心管中。
五、革兰氏阴性或阳性细菌
- 用户自备材料(细菌)
革兰氏阳性细菌裂解前应当用酶去除细胞壁(比如溶菌酶),但是本试剂盒不提供相应的酶。
溶菌酶缓冲液:20mM Tris·Cl(pH8.0),2mM sodium EDTA,1.2% Triton X-100
使用前,直接加入溶菌酶,配置浓度为20mg/mL。 - 实验准备
- Buffer ACL和Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入乙醇。
- 水浴锅56℃预热。
- Buffer ACL和Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
- 抽提步骤(细菌)
- 样品准备(菌液)
- 革兰氏阴性细菌:
- 将过夜培养的细菌(大约2×109个细菌)转移到离心管中,10000×g离心30 s,弃上清。
- 加入180μL Buffer ACL和20μL Proteinase K到样品中,涡旋充分混匀,56℃水浴1h。
- 加入200μL Buffer CL,涡旋充分混匀。
- 将过夜培养的细菌(大约2×109个细菌)转移到离心管中,10000×g离心30 s,弃上清。
- 革兰氏阳性细菌:
- 将过夜培养的细菌(大约2×109个细菌)转移到离心管中,10000×g离心30 s,弃上清。
- 加入180μL溶菌酶溶液(20mg/mL溶菌酶,20mM Tris-HCl,pH8.0,2mM EDTA,1.2% Triton X-100,试剂盒未提供),
充分混匀,37℃温浴30~60min。 - 加入200μL Buffer CL和20μL proteinase K。涡旋充分混匀,56℃水浴30min。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 如果需要RNA-free的基因组DNA,加入20μL RNase A (10mg/mL),涡旋混匀,室温孵育5min后再进行步骤2。
- 水浴过程间歇混匀,促进样品的裂解。
- 将过夜培养的细菌(大约2×109个细菌)转移到离心管中,10000×g离心30 s,弃上清。
- 革兰氏阴性细菌:
- 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤4-9操作。
- 样品准备(菌液)
六、精子样本
- 用户自备材料(精子)
准备Buffer X2:
20mM Tris·Cl(pH8.0),20mM EDTA,200mM NaCl,4% SDS。
使用前,直接加入80mM DTT(终浓度),12.5μL/ml Proteinase K。
不要使用工业酒精,因为其中含有甲醇或丁酮等其他化合物。
将1M DTT原液分装储存于-20℃。
精子基因组DNA提取不需要用到本试剂盒中的Buffer ACL。 - 实验准备
如上所述准备Buffer X2。
Buffer CL在保存过程可能会形成沉淀。如果有沉淀,使用前加热至56℃溶解。
提供的CW1 Solution和CW2 Solution为浓缩液。检查是否已正确加入乙醇。
水浴锅56℃预热。 - 抽提步骤(精子)
- 将100μL精液加入到离心管中,并加入100μL Buffer X2。56℃水浴直到样品溶解(至少1h)。水浴过程间歇混匀,促进样品裂解,或放置于恒温金属浴中。
- 加入200μL Buffer CL到样品中,涡旋充分混匀。然后加入200μL乙醇(96~100%),再次涡旋充分混匀。
- 样品、Buffer CL和乙醇应立即混匀并涡旋振荡或吹打充分混匀,形成均一的溶液。处理多个样品时,Buffer CL和乙醇可预混在一起,并一起加入溶液中以节省时间。
- 加入Buffer CL和乙醇时可能会形成白色沉淀。沉淀对结果无影响。
- 样品、Buffer CL和乙醇应立即混匀并涡旋振荡或吹打充分混匀,形成均一的溶液。处理多个样品时,Buffer CL和乙醇可预混在一起,并一起加入溶液中以节省时间。
- 将步骤2的混合液(包括所有沉淀)加入到套在2mL收集管的SD-10吸附柱中。以大于6000×g(8000rpm)的
离心速度离心1min。倒掉收集管中的液体。 - 根据“一、新鲜或冻存的动物组织”的抽提步骤6-9操作。
- 将100μL精液加入到离心管中,并加入100μL Buffer X2。56℃水浴直到样品溶解(至少1h)。水浴过程间歇混匀,促进样品裂解,或放置于恒温金属浴中。
- 吸附步骤中堵塞
- 确保样品在加入到吸附柱前已彻底匀浆。
- 减少样品使用量。根据第三页的建议使用适当量的样品。
- 确保样品裂解完全。裂解时间因组织类型不同而有所不同,通常为1~3h,可裂解过夜。
- 检查Buffer ACL和Buffer CL,如果储存过程形成沉淀,加热至56℃使沉淀溶解。
- 确保样品在加入到吸附柱前已彻底匀浆。
- 得率低。
- 将组织样品彻底匀浆。可用液氮或匀浆机处理组织样品。
- 使用适当量的样品。DNA得率取决于样品的类型、大小、年龄和保存方法根据第三页的建议使用适当量的样品。
- 请检查CW1 Solution和CW2 Solution是否已加入乙醇稀释。
- 请严格参照说明书对样品进行洗脱。参考说明书提供的注意事项。
- 避免吸附膜过于干燥。将SD-10吸附柱室温静置3~5min使吸附膜干燥。不要将吸附膜置于65℃。
- 将组织样品彻底匀浆。可用液氮或匀浆机处理组织样品。
- 血液形成血块,溶解产物无法通过吸附柱或得率低。
- 减少血液用量。根据说明书使用适当量的样品。
- 使用EDTA或ACD等抗凝剂收集血液,避免血液结块。
- 从血液样品中提取的DNA含量主要取决于血液中白细胞的数量及血液的保存条件。保存于-80℃的样品DNA得率通常会降低15%。为获得最好的效果,血液4℃保存应小于5天,长期保存应冻存于-80℃。
- 减少血液用量。根据说明书使用适当量的样品。
- 抑制后续实验酶促反应。
- 来源于CW2 Solution的残留乙醇可抑制后续实验的酶促反应。将吸附柱12000×g离心2min,室温开盖静置2~3min,以彻底去除残留乙醇。
- 残留的盐离子可抑制后续实验的酶促反应。Buffer CW1,CW2应于室温下使用(15~25℃)。
- PCR相关实验时减少基因组DNA模板使用量。100ng模板DNA中一个单拷贝的基因通常在35个PCR循环后可被检测到。
- 来源于CW2 Solution的残留乙醇可抑制后续实验的酶促反应。将吸附柱12000×g离心2min,室温开盖静置2~3min,以彻底去除残留乙醇。
- DNA降解。
- 使用新鲜样品。如果是冻存的样品,确保样品是取样后立即冷冻于液氮并合理保存于-70℃的样品。
- 不新鲜的样品常常只提取到降解的DNA。
- 使用新鲜样品。如果是冻存的样品,确保样品是取样后立即冷冻于液氮并合理保存于-70℃的样品。
- 纯化的DNA其A260/A280比值很高。
- DNA中有RNA污染,进行操作步骤中选做的的RNase处理实验。
- DNA中有RNA污染。
- 进行操作步骤中选做的的RNase处理实验。
- 直接将RNase加入到DNA洗脱液中。
- 进行操作步骤中选做的的RNase处理实验。
- DNA保存后发现降解。
- DNA可在2~4℃保存几个星期。如果要长期保存,DNA应保存于-20℃。
- 用CE buffer或TE buffer洗脱DNA,Tris或Tris-EDTA缓冲液具有足够的缓冲能力防止酸解。
- DNA可在2~4℃保存几个星期。如果要长期保存,DNA应保存于-20℃。
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